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版本號：08152012

MaxiDNA Purification Kit

大量 DNA 產(chǎn)物純化試劑盒

目錄號：  K0517

保   存：  室溫

組分說明

Cat.No.                                 K0517

KitSize                                   50

BufferPB                               60ml

BufferPS                                  15ml

BufferPW（concentrate）         10ml

BufferEB                                  10ml

SpinColumnDL                       50

CollectionTube（2ml）           50

產(chǎn)品簡介

      本試劑盒采用新型硅基質膜技術，通過快速簡單的結合-洗滌-洗脫步驟即可從大量的 PCR 產(chǎn)物或酶反應液（酶切，連接，探針標記等）中純化 50 bp-50 kb 的 DNA 片段，純化過程中可有效去除引物、寡核苷酸、酶等雜質，從而獲得高純度，高濃度，完整性好的 DNA 片段，回收率高達 90%。本試劑盒回收純化的 DNA 可直接用于測序、連接和轉化、標記、體外轉錄等分子生物學實驗。

注意事項

1.本試劑盒可無選擇性的回收溶液中所有 DNA 片段，如需選擇性回收特定片段，同時去除其他不同大小片段，請選擇我公司的膠回收試劑盒（K0524, 加 K2302，K0518 或 K0526）。

2.第--次使用前應按照試劑瓶標簽的說明在BufferPW中加入無水乙醇。

3.使用前請檢查BufferPB是否出現(xiàn)結晶或者沉淀，如有結晶或者沉淀現(xiàn)象，可在37℃水浴幾分鐘，即可恢復澄清。

4． 回收率與初始DNA量和洗脫體積有關。

5． 所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。

自備：無水乙醇，離心管

操作步驟

1.估計DNA反應液的體積，加入5倍體積的Buffer PB，充分混勻（如DNA反應體系為100µl，則加入500µlBufferPB，無需去除石蠟油或礦物油）。

注意：在加入BufferPB后檢測溶液的pH值，若pH值大于7.5，可向其中加入10-30 μl 的3M醋酸鈉（pH5.0），從而將pH值調到5-7。

2.柱平衡：向已裝入收集管（CollectionTube）中的吸附柱（SpinColumnDL）中加入200  μl Buffer PS，12,000rpm（~13,400×g）離心2分鐘，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱重新放回收集管中。

3.將步驟1中所得溶液加入到已裝入收集管的吸附柱中，室溫放置2分鐘，12,000rpm離心1分鐘，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱放回收集管中。

注意：吸附柱容積為700µl，若樣品體積大于700µl可分批加入 。

4. 向吸附柱中加入650 µl Buffer PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000rpm離心1分鐘，倒掉收集管中的廢液，

5. 將吸附柱放回收集管中。

6.注意：如果純化的DNA用于鹽敏感實驗（例如平末端連接實驗或直接測序），建議加入BufferPW后靜置2-5分鐘再離心。12,000rpm離心2分鐘，倒掉收集管中的廢液。將吸附柱置于室溫數(shù)分鐘，以*晾干。

注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除，乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶促反應（酶切、PCR等）。為確保下游實驗不受殘留乙醇的影響，建議將吸附柱開蓋，置于室溫放置數(shù)分鐘，以*晾干吸附材料中殘余的乙醇。

7. 將吸附柱放到一個新離心管（自備）中，向吸附膜中間位置懸空滴加100 µl Buffer EB（pH 8.5），室溫放置2分鐘。

8. 12,000rpm離心1分鐘，收集DNA溶液。-20℃保存DNA。

注意：1）洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液，應保證其pH值在7.0-8.5之間（可以用NaOH將水的pH值調到此范圍）。

2）為了提高DNA的回收量，可將離心得到的溶液重新滴加到吸附柱中，重復步驟6。

3）洗脫體積不應小于50μl，體積過少會影響回收率。

4）如果使用TE洗脫，需要考慮其中含有的EDTA是否會影響后續(xù)的酶促應。

5）回收大于10kb的DNA片段時，BufferEB應在50℃水浴中預熱，適當延長吸附和洗脫時間，可增加回收效率。

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